Методы забора материала для цитологического исследования — LiveAcademy

Взятие, условия хранения и доставки материала из генитального тракта для проведения цитологического исследования на клеточный состав и атипические клетки

Методы забора материала для цитологического исследования — LiveAcademy

Цитологическое исследование в настоящее время – признанный полноценный метод морфологическо-го анализа, основанный на изучении и оценке клеточного материала.

Цитологическому исследованию подвергаются все женщины с выявленой патологией шейки матки, а при отсутствии таковой – цитологическому обследованию подлежат возрастные группы женщин старше 30 лет.

Профилактический осмотр женщин с цитологическим исследованием должен проводиться не менее 1 раза в год.

Материал для исследования

Соскоб из цервикального канала и влагалищной части шейки матки, аспират или соскоб из заднего нижнего свода влагалища, соскобы с пораженных участков вульвы, наружного зева, аспираты из полости матки, пунктаты яичника или новообразований в стенке влагалища.

Подготовка пациентки и взятие биологического материала

В течении 24 часов перед исследованием не следует проводить спринцевание, а так же необходимо исключить применение интравагинальной терапии. Нельзя брать материал во время менструации. Для цитологических исследований взятие материала проводит врач-гинеколог.

Для получения материала для исследования используют следующие инструменты: шпатель Эйра (предназначен для получения эктоцервикальных мазков и мазков заднего свода), спиретте (специальное аспирационное приспособление, предназначенное для экто- эндоцервикальной аспирации и проведения посткоитусных тестов), скринет (предназначен для взятия эндоцервикальных мазков), эндобраш (предназначен для взятия эндометриальных мазков), нейлоновые щеточки (Cervex-Brush), гинекологический пинцет, корнцанг, желобоватый зонд, ложечки Фолькмана, гинекологические зеркала и др. Все инструменты должны быть стерильными и сухими.

Влагалищная часть шейки матки, наружный зев, цервикальный канал

Для получения опптимальных результатов необходимо отдельно собирать эктоцервикальные и эндоцервикальные образцы. Взятие материала осуществляется до бимануального исследования.

Шейку матки при помощи зеркал тщательно осматривают, затем без предварительной обработки слегка соскабливают поверхность патологически измененного участка или всей влагалищной части шейки вокруг наружного зева.

Из полученного соскоба делают один тонкий равномерный мазок во всю длину предметного стекла.

При взятии материала шпателем Эйра возможно получить материал одновременно с поверхности шейки матки, из зева и нижней трети цервикального канала. Шпатель Эйра имеет на одном конце неравные тупые кончики. Один, более длинный и узкий, вставляется в наружный зев цервикального канала, другой, более низкий и широкий, прилегает к поверхности шейки матки.

Вращательными движениями при легком надавливании получают соскоб. Далее, этим же шпателем с полученным материалом делают тонкие мазки, получая на одном стекле сразу две полоски: в одной материал из нижней трети цервикального канала и наружного зева, в другой – с поверхности шейки матки.

Далее мазки должны быть зафиксированы посредством высушивания на воздухе.

Специальная конструкция для взятия эндоцервикальных мазков, скринет является обязательным дополнением к шпателю Эйра при проведении скрининга рака шейки матки.

Скринет позволяет получить богатый клетками, хорошо сохраняющийся материал, что гарантирует улучшение качества получаемых мазков и показателей скрининга онкологической патологии. Будучи доступным в двух размерах, скринет может быть легко введен в любой цервикальный канал, в частности женщин постменопаузного периода.

Скринет обеспечивает абсолютно безвредный доступ к зоне перехода эпителия влагалища в призматический эпителий цервикального канала, что особенно важно при ее высоком расположении.

Для взятия биологического материала скринет плавно вводится в цервикальный канал. Далее, для получения мазка необходимо сделать только одно вращение (слишком большое количество оборотов может отрицательно сказаться на целостности клеток).

После взятия биологического материала скринет, без совершения дополнительных вращательных движений, плавно выводится из шейки матки.

Взятый биологический материал наносится на чистое обезжиренное стекло одним вращательным движением (по анологии с получением материала) и затем высушивается на воздухе.

При взятии биологического материала с помощью спиретте возможно проведение экто- и эндо-цервикальной аспирации. После введения инструмента в шейку матки его дистальный конец подводится к месту, откуда необходимо взять образец ткани (эндо- или эктоцервикс).

Аспирационный эффект достигается передвижением внутреннего поршня. После взятия образца биологического материала спиретте извлекается из шейки матки.

Затем обратным движением поршня полученный образец биологического материала наносится на предметное стекло и фиксируется, высушиванием на воздухе.

Кроме того, слущенные клетки можно получить с помощью мазков отпечатков со слизистой оболочки влагалища и шейки матки. В этом случае мазки готовят из соскобов шпателем, содержимое которых наносятся на предметное стекло в виде отпечатков.

Материал отдельно из цервикального канала можно получить при помощи гинекологического пинцета, желобоватого зонда, ложечки Фолькмана и др. или путем аспирации содержимого цервикального канала.

Взятие материала из цервикального канала проводят только после удаления цервикальной слизистой пробки. Исследуемый материал, нанесенный на сухое, обезжиренное предметное стекло должен быть обязательно высушен на воздухе.

Подсушенное стекло (мазок) маркируется.

К каждому стеклу должен прилагаться бланк-направление на цитологическое исследование, номер которого должен соосветствовать номеру (маркировке) мазка.

В бланке указывается: учреждение, проводившее взятие биологического материала и дата его взятия; фамилия, имя, отчество обследуемой женщины; ее возраст, дата последней менструации, место взятия биологического материала, клинический диагноз; при отсутствии патологии необходимо указать, что шейка матки без изменений.

Влагалище

Взятие образцов проводится путем аспирации содержимого заднего свода или соскоба со слизистой оболочки.

Аспирация содержимого из заднего свода должна проводиться под визуальным контролем при исследовании зеркалами, при этом необходимо использовать несмазанные зеркала и получать материал до пальцевого исследования.

При осмотре с использованием влагалищных зеркал вводят свободный конец канюли до заднего свода, содержимое насасывают в канюлю резиновой грушей, аспират выдувают на сухое обезжиренное предметное стекло и делают тонкий мазок краем шлифованного стекла.

Содержимое заднего свода представляет собой случайно накопленный пул из разных отделов генитального тракта, поэтому его исследование целесообразно проводить только как ориентировочное. При патологических находках необходимо тщательное исследование материала из отдельных мест.

Материал из заднего свода может быть использован также для оценки микробиоценоза влагалища. Образцы материала из влагалища берут до манипуляций в шейке. Соскабливание проводится сверху вниз в передней, задней и боковых стенках влагалища.

При наличии опухоли в стенке влагалища производят пункцию тонкой иглой.

Эндометрий

Использование эндобраш позволяет легко и безболезненно брать эндометриальные цитологические мазки при отсутствии необходимости тракции или расширения цервикального канала.

Перед взятием мазков эндометрия необходимо исключить возможность наличия беременности, вагинита или цервицита.

Все манипуляции на эндометрии могут проводиться только при условии полного излечения инфекций слизистой влагалища и шейки матки.

При обследовании ряда женщин менопаузного периода, использование эндобраш может оказаться неоправданным, ввиду наличия стенотических изменений цервикального канала.

После наложения зеркал и обработки шейки матки антисептическим раствором мандрен эндобраш вытягивается так, чтобы его щетка полностью исчезла внутри внешней части инструмента, а его колпачек, расположенный на дистальном конце закрыл дистальную часть внешнего контура эндоброш.

Затем, инструмент плавно вводится в полость матки до тех пор, пока дистальный колпачек не достигнет дна матки (нанесенные на инструменте метки помогают определить размеры полости матки). Перед началом взятия мазков наружная часть инструмента смещается вниз, освобождая находящуюся внутри щетку.

Далее делается одно или два вращательных движения мандреном вправо или влево для получения соскобов со стенок матки. После этого, наружная часть инструмента смещается в исходное положение для сохранения полученного биологического материала и эндобраш полностью извлекается из полости матки.

Полученный материал наносится на предметное стекло и фиксируется на воздухе.

Вульва

С вульвы материал берут при подозрении на рак. Область поражения тщательно обрабатывают изотоническим раствором хлорида натрия или слабым дезинфицирующим раствором для удаления элементов воспаления и некротических масс. Промокают салфеткой и делают соскоб шпателем или каким-либо другим инструментом с несколько заостренными краями.

Источник: https://analyz24.ru/poleznaya-informatsiya/nauchno-populyarnye-stati/nauchno-populyarnye-stati_195.html

Инструменты для забора материала с шейки матки для цитологического исследования

Методы забора материала для цитологического исследования — LiveAcademy

Данный обзор ставит своей целью найти подходящий метод скрининга рака шейки матки путем сравнения преимуществ и недостатков использующихся в настоящее время инструментов для взятия мазка по Папаниколау (цитологического мазка).

Инструмент, используемый для взятия цитологического мазка, имеет большое значение.

Данный обзор демонстрирует, что широко используемые деревянные шпатели (шпатели Эйра) для получения клеток из цервикального канала – это не лучший инструмент для получения адекватного материала и выявления патологических клеток. Было обнаружено, что деревянные шпатели с удлиненным и суженным концом, так называемые шпатели Aylesbury , лучше подходят для этой цели.

Был проведен тщательный поиск и обзор статей. Мета-анализ данных был выполнен надлежащим образом, а результаты представлены ясно.

2.1. Масштабы проблемы

Согласно Parkin et al. (1) рак шейки матки – это наиболее распространенный вид рака у женщин в развивающихся странах. В Таиланде в 1990 г. зарегистрировано 5593 новых случая (2).

Самая высокая частота новых случаев обнаружена в Хараре (Зимбабве), где обнаружена частота, стандартизованная по возрасту (ASR), 67,2 на 100 000. В Таиланде самая высокая ASR – в Чианг Маи (29,7/100 000), за ней следует Кхон-Каен (23,9/100 000).

С внедрением программ цервикального скрининга за последние три десятилетия наблюдалось снижение частоты новых случаев и смерти от инвазивного рака шейки матки.

2.2. Практическая осуществимость вмешательства

Поскольку деревянный шпатель Aylesbury (или с удлиненным концом) не во многом отличается от шпателя Эйра, то с технической точки зрения внедрение в практику работы этого нового инструмента не должно быть проблемой. Изначально будут затраты, связанные с переходом на использование такого нового инструмента, но в долгосрочной перспективе с таким переходом справиться будет легко.

2.3. Применимость результатов данного Кокрановского обзора

Широко используемый шпатель Эйра есть практически во всех больницах и клиниках во всех уголках Таиланда. Деревянные шпатели Aylesbury с удлиненным и суженным концом, которые оказались лучше, можно внедрить вместо шпателей Эйра.

Хотя все исследования, включенные в данный Кокрановский обзор, были проведены в промышленно развитых странах, результаты этого обзора в равной степени применимы и к условиям развивающихся стран.

2.4. Внедрение обсуждаемого подхода

В Таиланде переход на инструмент Aylesbury, вероятно, сначала будет сопряжен с некоторыми трудностями, так как необходимо будет убедить медработников в преимуществах нового инструмента. Возможно, понадобится проведение, например, однодневных тренингов для медработников по всей стране.

Такой тренинг должен также включать занятия по теме перенесения материала со шпателя на препаратное стекло. Нужно сделать акцент на важность наблюдения с помощью кольпоскопии.

Некоторые врачи, не понимающие процесс скрининга, могут опасаться дополнительной нагрузки, и с ними нужно будет работать больше, чем с другими.

2.5. Научные исследования

Основные проблемы, связанные со скринингом рака шейки матки в странах с ограниченными ресурсами – это неимение или недоступность кольпоскопического осмотра и надлежащих ЛПУ для тех, кому понадобится лечение. Было обнаружено, что дальнейшее обследование в случае положительного результата цитологического мазка или цервикальной дисплазии проводится только в 50% случаев (3).

Поэтому почти бесполезно внедрять более чувствительный инструмент и метод получения более точного прогностического значения, если пациенты не привержены, а дальнейшее обследование не предлагается.

Дальнейшие исследования должны коснуться проблем неприверженности пациентов, а также рассмотреть методы улучшения наблюдения за женщинами, у которых результат цитологического мазка оказался положительным.

Эффективность инструмента Като (4), недавно опробованного в сельской местности Таиланда в качестве метода для самоскрининга, необходимо сравнить с более широко используемыми инструментами в плане эффективности и экономических затрат.

Поддержка предоставлена: Онкологическое отделение медицинского факультета Университета Khon Kaen, Khon Kaen, Таиланд.

Благодарность: Pisake Lumbiganon, Медицинский факультет Университета Khon Kaen, Khon Kaen, Таиланд.

Литература

  • Parkin DM, Whelan SL, Ferlay J and Powell J, eds. Cancer incidence in five continents, Volume VII Lyon, International Agency for Research on Cancer. IARC Scientific Publications No. 143. 1997.
  • Vatanasapt V, Martin N, Sriplung H et al. Cancer in Thailand, 1988-1991. Cancer epidemiology, biomarkers and prevention 1995;4:475-483.
  • Udomthavornsuk B, Kanjanavirojkul N, Lumbiganon P, Pengsaa P and Pothinam S. Comparative study of VCE and cervical screening Pap smear. Srinagarind Hospital medical journal 1991;6:226-230.
  • Pengsaa P, Vatanasapt V, Sriamporn S, et al. A self-administered device for cervical cancer screening in Northeast Thailand. Acta cytologica 1997;41:749-754.

Источник: https://extranet.who.int/rhl/node/76547

Методы забора материала для цитологического исследования

Методы забора материала для цитологического исследования — LiveAcademy

Соскоб с поверхности экзоцервикса, влагалища, вульвы берут специальным шпателем. Материал из эндоцервикса берут смоченным в физиологическом растворе ватным тампоном или цервикальной щеточкой — эндобрашем. Щеточкой удается взять в 7 раз больше клеток. Чтобы получить информативный мазок, нужно соблюсти следующие правила:

· Материал для мазка берут перед бимануальным исследованием;

· Сначала проводят забор материала для цитологического исследования, а потом — для выявления возбудителей инфекций, передающихся половым путём;

· При обильных выделениях из половых путей перед исследованием их удаляют большим тампоном;

· Сначала берут соскоб с шейки матки, а потом из цервикального канала;

· Допустимо два образца (с экзоцервикса и эндоцервикса) наносить на одно стекло;

· Небольшие кровянистые выделения не влияют на результат цитологического исследования, но при обильном кровотечении забор материала следует отложить.

Полученный материал равномерно распределяют тонким слоем по специально обработанному обезжиренному предметному стеклу, чтобы не было комков, и немедленно фиксируют, пока мазок еще не высох, смесью эфир/96% этиловый спирт или только 96% этиловым спиртом. При использовании фиксирующих аэрозолей головку распылителя следует держать на расстоянии не менее 25 см от предметного стекла, чтобы не нарушить расположение клеток.

Забор материала для исследования на р16 (жидкостная цитология)

Забор материала рекомендуется производить при помощи одноразовой цервикальной щеточки (cervix-brush). Конус щеточки осторожно направляется в цервикальный канал.

После введения в него конуса остальная часть щеточки прижимается к поверхности эктоцервикса, и производится 5 полных круговых вращений — три по часовой стрелке и два — против часовой стрелки. Перед проведением данных манипуляций необходимо тщательно очистить шейку матки от слизи.

Это чрезвычайно важно, так как слизь в дальнейшем затрудняет интерпретацию результатов иммуноцитохимического окрашивания.

Щеточку с материалом необходимо опустить в контейнер с жидкой транспортной средой и тщательно ополоснуть ее там. При этом нужно стараться, чтобы «щетинки» cervix-brushполностью погружались в раствор. Жидкая среда и клеточная среда должны храниться в холодильнике при температуре от +2 до +8оС. Клеточная суспензия стабильна в течение 10 дней.

Щеточка cervix-brush позволяет забирать клеточный материал не только с эктоцервикса, но и с расположенной в области наружного зева зоны трансформации и в большинстве случаев с наружной трети цервикального канала. Поэтому при скрининговом исследовании (т.

е. когда нет подозрения на патологию шейки матки) можно ограничиться использованием щеточки cervix-brush. Если врач считает, что требуется более тщательный забор материала с эндоцекрвикса, то можно дополнительно воспользоваться щеточкой типа цито — brush.

Рекомендуется обязательно использовать щеточку цито-brush в следующих ситуациях:

· до этого методом привычной цитологии уже была диагностирована дисплазия;

· пациентка в прошлом проходила лечение от дисплазии;

· имеются жалобы на ациклические либо контактные кровомазания;

· пациентка в прошлом перенесла конизацию или диатермокоагуляцию шейки матки;

· если при кольпоскопии анияого методом привычной цитологии уже была диагностирована дисплазэлементы аномальной зоны трансформации уходят в цервикальный канал, и стык эпителиев не визуализируется.

Бывают случаи, когда у пожилых пациенток суженный или атрезированный наружный зев не пропускает мягкие ворсинки конуса Cervix-brush.

Тогда мы рекомендуем взять щеточкой Cervix-brush материал только с эктоцервикса, так как вы бы это сделали шпателем, но, совершив большее число разнообразных движений по эктоцервиксу, так чтобы все ворсинки щеточки были задействованы.

Затем следует попытаться получить мазок с эндоцервикса щеточкой цито-brush, которую легче провести в суженный цервикальный канал. Если пройти за наружный зев не удается, то пометьте в направлении и амбулаторной карте, что наружный зев атрезирован и мазок с эндоцервикса не получен.

Дата добавления: 2015-11-26 ; просмотров: 149 | Нарушение авторских прав

Цитологический метод

Материал для цитологического исследования получают разным путем.

Так, эксфолиативный способ заключается в отстаивании биологических жидкостей от пациента (крови, мокроты), которые в результате расслаиваются: плазма отделяется от форменных элементов крови, а в мокроте выпадает в осадок слизь, эпителий и бактерии.

Можно получить материал для исследования с помощью соскоба или смывов, мазков отделяемого из свища, сосков молочных желез и др. Чаще таким образом получают материал для диагностики кожных (в том числе онкологических заболеваний.

Для цитологического исследования щитовидной железы, костного мозга, ликвора, кист, опухолей и внутренних органов материал берут у больного пункцией.

Для этого делают прокол иглой (инъекционной или специальной) и забирают жидкое содержимое полостных образований с помощью обычного шприца. Забор тканей внутренних органов для исследования называется биопсией, которую выполняют специальными инструментами.

Можно подвергнуть анализу и частицы твердых тканей, оставшихся в полости иглы или инструмента для биопсии после прокола.

Образцы тканей внутренних органов для исследования можно взять с помощью эндоскопической биопсии: в желудочно-кишечный тракт, бронхи или брюшную полость вводят гибкий прибор с волоконной оптической системой и режущим инструментом.

Затем выбирают наиболее подозрительное на патологию место и выполняют несколько срезов тканей. При этом соблюдают следующее правило: первый срез делают на наиболее измененном участке органа, а затем берут еще несколько проб из прилегающих зон и других очагов поражения.

В этом случае кровотечение из травмированных тканей не приведет к ошибочному забору материала.

Пункция и биопсия — сложные способы забора материала для исследования, часто они достаточно болезненны, а потому их проводят с обезболиванием, зато именно они позволяют свести ошибку в диагнозе к минимуму.

Исследуют как окрашенные и фиксированные образцы тканей, так и живые. Анализ проводят с помощью микроскопии и химических реакций. Цитологические исследования полученного материала достаточно быстры в исполнении и относятся к прижизненной диагностике.

Наиболее широко их используют для выявления раковых и предраковых заболеваний при массовых профилактических осмотрах. В ходе исследования определяют тип эпителиальных клеток, стадию их развития и патологические изменения в них.

Выявление и наблюдение динамики предраковых заболеваний или рака на ранних стадиях возможно только этим методом.

В зависимости от способа получения материала от больного для исследования можно определить размеры злокачественной опухоли, распространенность процесса (частичное, полное поражение органа, переход на окружающие орган ткани и соседние органы). С помощью цитологического исследования можно отличить первичную опухоль от вторичной, вызванной распространением раковых клеток по организму.

Большое значение для цитологического исследования имеют точные данные о происхождении материала, особенно если он взят из нескольких мест. Поэтому все мазки и соскобы после забора необходимо правильно маркировать (пометки делают и на предметном стекле и в сопроводительной документации).

Для получения достоверных результатов цитологического исследования важны сведения о проводимом лечении, так как многие лекарственные препараты (гормоны, цитостатики) оказывают непосредственное воздействие на клетки и изменяют их состояние. Кроме того, при неправильном выборе места для забора материала от больного заболевание может быть не выявлено.

Если результат анализа вызывает сомнение, то назначают повторное цитологическое исследование.

Признаки озлокачествления клеток, выявляемые при исследовании:

1) изменение расположения клеток относительно друг друга в определенных тканях (наслоение, группировки);

2) нечеткие границы;

3) одновременное присутствие живых измененных и мертвых клеток;

4) изменение размеров клеток (уменьшение, увеличение);

5) изменение формы клеток;

6) разнообразие клеток по структуре (в исследуемом материале присутствуют клетки различных стадий развития, много незрелых клеток);

7) окрашивание цитоплазмы в синий цвет химическими красителями;

8) наличие в цитоплазме множества вакуолей, твердых включений;

9) разнообразие ядер по структуре;

10) увеличение размеров ядер;

11) изменение объемного соотношения между ядром и цитоплазмой;

12) неравномерное распределение хроматина;

13) изменение структуры хроматина;

14) усиленное окрашивание ядер;

15) наличие ядер с разной степенью окрашивания;

16) увеличение размеров ядрышек и их числа;

17) увеличение числа клеток находящихся в состоянии митоза (деления);

18) наличие клеток с неправильным делением.

Весь материал представлен для ознакомительных целей

УНИВЕРСИТЕТСКАЯ

Адрес: ул. Одесская, 54 (гл. корпус Тюменского ГМУ.), 6 этаж

Телефоны регистратуры:

Источник: https://live-academy.ru/metody-zabora-materiala-dlya-citologicheskogo-issledovaniya/

Взятие и отправка материала на цитологию

Методы забора материала для цитологического исследования — LiveAcademy

От того, насколько правильно будет произведено взятие, оформление и отправка патологического материала в лабораторию, во многом зависит успех и качество последующего цитологического исследования. Не следует пренебрегать этим долабораторным преаналитическим этапом.

Чтобы сократить количество ошибок на данном этапе, мы подготовили для врачей небольшую заметку о том, как правильно взять, оформить и отправить материал на цитологию в CYTOVET.

Условно можно выделить 5 пунктов в алгоритме действий, выполнив которые ветеринарный врач, ответственный за взятие и отправку материала, значительно облегчит работу врача-морфолога, снизит до минимума вероятность ложного диагноза, повысит статус и качество выполняемой работы.

Итак, алгоритм следующий:

  1. Фотографирование на объекте.
  2. Подготовка инвентаря.
  3. Взятие материала.
  4. Оформление.
  5. Отправка.

Фотографирование на объекте

Прежде, чем приступать к взятию материала, сфотографируйте место локализации ис­следуемого патологического участка с линейкой, чтобы было можно визуально оценить внешний вид, степень и размер поражения.

Как правильно сфотографировать проблемный участок с патологическим процессом на объекте.

Кроме того, соберите все изображения, полученные во время исследования патологического участка методами визуальной диагностики (рентген, КТ, МРТ, УЗИ и др.).

Изображения, полученные различными методами визуальной диагностики (КТ, рентген, УЗИ).

Соберите все фотографии вместе, подпишите и отправьте одним письмом на нашу электронную почту: info@cytovet.ru.

Подготовка инвентаря

Для взятия, оформления и отправки материала на цитологию понадобится следующий инвентарь:

  • карандаш, маркер;
  • скальпель;
  • шприц (5, 10 или 20 мл);
  • кюретажная ложка;
  • гемостатический зажим;
  • цитологические щётки;
  • 2-4 предметных стекла;
  • пробирка Эппендорфа с транспортной средой CYTORICH;
  • бланк направления CYTOVET.

Инвентарь, необходимый для взятия, оформления и отправки материала на цитологию.

Взятие материала

Важно: отправляемый материал должен быть из одной локализации.

Взятие материала для цитологического исследования может производиться несколькими методами. Рассмотрим два из них: метод внутриигольной пункционной биопсии и изготовление мазка-отпечатка.

Внутриигольная пункционная биопсия

При этом методе предметные стёкла подготавливаются на месте.

Шприц предварительно заполняют 2 мл воздуха. Рекомендуется произвести гепаринизацию, но она не обязательна.

Для нанесения материала на предметное стекло:

  • выполняют пункционную биопсию, взяв образец клеток на кончике иглы;
  • выпускают содержимое иглы на предметное стекло и готовят препарат методом воздушной сушки мазка.

Для исследования понадобится 1-3 предметных стекла.

Для помещения материала в пробирку Эппендорфа:

  • выполняют пункционную биопсию, взяв образец клеток на кончике иглы;
  • промывают иглу и шприц 1,5-2 мл раствора CYTORICH® Red Preservative Fluid, чтобы очистить шприц и иглу;
  • перед дальнейшей обработкой образцу следует дать зафиксироваться в течение не менее 30 минут. Смыв со шприца с иглой сохранит устойчивость до нескольких недель.

Для обработки образца, перемешанного с фрагментами тканей, закрывают отверстие первоначального сосуда для взятия пробы тонкой сеткой (как фата) и переливают жидкий образец в коническую пробирку. Затем фиксируют фрагменты тканей формалином и обрабатывают методом клеточного блока.

Методика изготовления мазка-отпечатка

Методика изготовления мазка-отпечатка.

Этот метод позволяет произвести комплексное морфологическое исследование патологического образца и предпочтителен при последующем гистологическом исследовании.

Оформление

Для оформления направляемого в CYTOVET материала используйте наше направление на цитологическое и гистологическое исследование, которое можно скачать с любой страницы сайта в формате PDF, кликнув по соответствующей картинке над блоком «Последние новости» в правой колонке сайта.

Либо используйте для скачивания картинку слева.

Отправка

Материал вместе с направлением на исследование нужно отправить с курьером на адрес:

194362, г. Санкт-Петербург, Парголово, ул. Байкальская, 20.

Мы с пониманием отнесемся, если материалы будет передавать кто-то из ваших сотрудников, проживающий или работающий по совместительству в ветеринарной клинике в северном районе города (станции метро: Проспект Просвещения, Озерки, Пионерская, Комендантский проспект, Гражданский проспект). В этом случае мы можем сами забрать материал, а вам не нужно будет оплачивать курьерские услуги.

Полезная заметка:
Пересылка патологического материала в CYTOVET из регионов

Источник: https://cytovet.ru/stati/vzyatie-i-otpravka-materiala-na-citologiyu/

Консультация доктора
Добавить комментарий