Окраска по Романовскому — Гимзе

Окраска мазков

Окраска по Романовскому — Гимзе

Окрашивание мазков крови требует внимания и известного опыта со стороны исследователя. Прекрасно приготовленный и хорошо зафиксированный мазок может быть испорчен плохим окрашиванием. Причинами неудачного окрашивания может быть плохое качество краски или же несоблюдение правил окрашивания.

Окрашивание мазков крови должно быть прогрессивным и паноптическим. под прогрессивным окрашиванием понимают продолжительное окрашивание слабыми растворами краски. Окраска зависит от прямого сродства элементов крови к краске.

Паноптическим окрашиванием выявляется возможно большее число элементов крови с мельчайшими нюансами тонов окраски. В отличие от комбинированного метода, паноптический требует применения нейтральных красок, а не смеси основных и кислых красок.

Рис. Приспособление для окрашивания мазков.

Среди нейтральных, паноптических красок наиболее важное место занимают азур-эозиновые смеси, изготовляемые по принципу Романовского (1891 г.).

В СССР в настоящее время выпускается готовый раствор азур-эозина (по Романовскому), в Германии широкое распространение нашла краска Гимза, выпускаемая в продажу под названием «Giemsa's Losung fur Romanowsky farbung», состоящая из: азур 2-эозина—3,0, Азур 2—0,8, глицерина химически чистого 125 мл, метилового алкоголя химически чистого 375 мл.

Окраска по Романовскому— Гимза. Для окрашивания используется готовый раствор краски.

Перед употреблением краска разводится из расчета 1—2 капли на 1 мл дистиллированной Зафиксированный препарат помещают мазком вверх на стеклянные палочки над чашкой ипокрывают поверхность мазка высоким слоем разведенной краски. Окрашивание можно производить также в кюветах, наполненных раствором краски.

Окрашивание продолжается 15—30 минут; для свежих мазков и в сухую жаркую погоду времени требуется меньше, чем при окраске старых мазков или при окраске в сырую и холодную погоду. По истечении определенного времени краску смывают, лучше дистиллированной водой, мазок для высушивания ставят вертикально на пропускную бумагу.

Высушивание мазка можно производить подогреванием на руке.

При окрашивании по методу Романовского—Гимза необходимо соблюдать ряд предосторожностей, чтобы получить правильную окраску:

1) вода должна иметь рН=6,6—6,8;

2) посуда, в которой разводится краска, должна быть чистой;

3) раствор краски готовится ex tempore, перед окраской, а не заранее,

Так как наилучшее окрашивание получается в момент разбавления алкогольного раствора водой;

4) краску следует добавлять в воду по каплям, а не наливать сразу;

5) концентрация раствора не должна превышать три капли на 1 мл;

6) для получения красивой дифференциальной окраски рекомендуется
оставлять дистиллированную воду на мазке после промывки в течение 1 минуты.

Правильная окраска узнается по внешнему виду. Макроскопически мазок должен быть окрашен в розоватый цвете незначительным фиолетовым оттенком. Серые или серо-голубые мазки указывают на избыток щелочи, яркокрасные— на избыток кислоты или слишком кратковременное окрашивание.

Метод Романовского—Гимза особенно хорош при окрашивании мазков на кровепаразитов, а также при окрашивании одновременно нескольких мазков.

Модификация окраски мазков крови краской Романовского — Г имза по Филипсону. Для окрашивания по этому методу требуется особое приготовление краски, которое можно производить заранее, но можно и в момент окрашивания. Берется одна часть жидкой краски Романовского и три части этилового спирта (ректификата). После смешивания со спиртом краска сразу же пригодна для употребления.

На нефиксированный мазок крови наносится 10—15 капель приготовленной вышеуказанным способом краски. Через 10—15 минут, необходимых для фиксации мазка, наливается примерно 0,5—1 мл дистиллированной воды, которая тщательно смешивается с краской.

Окрашивание мазка продолжается в течение 20—30 минут (длительность периода окрашивания изменяется в зависимости от температуры воздуха, качества краски и некоторых других причин и может быть установлена в каждой лаборатории самостоятельно).

Затем краска смывается дистиллированной водой и мазок высушивается. Высохший мазок годен для исследования.

Окраска по Лейшману. Окраска производится готовым раствором краски Лейшмана. Метод не требует предварительной фиксации, а потому считается быстрым и сравнительно удобным.

На нефиксированный мазок крови наслаивают 15—20 капель краски Лейшмана и оставляют на 3 минуты. Краска, содержащая метиловый алкоголь, фиксирует мазок и одновременно окрашивает клетки крови.

По истечении определенного времени в краску добавляется такое же количество дистиллированной воды (15—20 капель) и при помощи стеклянной палочки или пипетки осторожно перемешивают краску с водой. Через 7—15 минут разведенную краску смывают дистиллированной водой.

Так же, как и при окрашивании по Романовскому—Гимза, дистиллированную воду лучше в течение 1 минуты оставить на мазке. Затем мазок ставится в вертикальное положение или же высушивается на руке. Краска Лейшмана дает очень хорошие результаты при окрашивании мазков из костного мозга.

Окраска по Ма й-Г рюнвальд. Окрашивание производится готовым раствором краски Май-Грюнвальд. На нефиксированный мазок: крови наносится 15—20 капель краски и оставляют на нем 3 минуты.

По истечении указанного времени на мазок наслаивают такое же количество капель дистиллированной воды (15—20 капель). Краска хорошо перемешивается с водой при помощи стеклянной палочки и докрашивается еще 10—15 минут.

Дальше препарат промывается дистиллированной водой и высушивается.

Окраска по Паппенгейму. Этот метод соединяет преимущества окраски по Май-Грюнвальду и Романовскому—Гимза. Окраска является комбинированной и заключается в том, что мазок вначале окрашивается по методу Май-Грюнвальда, а затем докрашивается по методу Романовского— Гимза.

На нефиксированный мазок крови наносится 15—20 капель краски Май-Грюнвальда и выдерживается в течение 3 минут. После этого к краске добавляется такое же количество дистиллированной воды и после перемешивания оставляют еще на 3 минуты. Затем краска сливается, стекло ставится краем на пропускную бумагу, чтобы стекла вода.

После этого на невысохший еще мазок наслаивается свежеприготовленная краска Романовского—Гимза (15— 20 капель краски на 10 мл воды) и мазок докрашивается дополнительно 15— 30 минут, смотря по давности мазка. По истечении указанного времени краска смывается и мазок высушивается.

Если мазки окрашиваются интенсивно, их можно раскрасить дистиллированной водой в течение 1 минуты, а затем высушить.

Витальная окраска мазков крови для выявления гра-нулофиламентозной субстанции в эритроцитах. Для витального окрашивания используются бриллианткрезилбляу, толлуидинбляу, нейтральрот, азур и некоторые другие краски.

Самой употребительной является бриллианткрезилбляу, которая окрашивает быстрее других красок и вместе с тем дает более четкий рисунок субстанции. Для окрашивания применяется спиртовой раствор краски в разведении 1 :80.

Используется для этой цели абсолютный алкоголь.

На слегка подогретое предметное стекло стеклянной палочкой наносится капля краски и быстро размазывается наподобие мазка крови. На стекле образуется едва заметный серовато-фиолетовый налет краски. Окрашенные таким образом стекла могут храниться продолжительное время в сухом месте.

На окрашенной поверхности стекла делают в дальнейшем мазки крови, которые тотчас же вносятся во влажную камеру на 3—5 минут. Влажную камеру можно приготовить из бактериологических чашек.

В нижнюю чашку по окружности кладется фильтровальная бумага, смоченная в воде; в центр чашки можно положить две спички, на которые и помещается предметное стекло мазком вверх, после чего чашка закрывается другой чашкой. По истечении определенного времени мазок вынимают из влажной камеры и высушивают.

Витально окрашенные мазки можно дополнительно окрасить краской Романовского—Гимза или Лейшмана. Дополнительное окрашивание дает очень красивые мазки, но часть субстанции при этом исчезает.

Для устранения этого недостатка витально окрашенный мазок мы докрашиваем предварительно 1%-ным спиртовым раствором метиленовой синьки в течение 1—2 минут с последующей докраской по Лейшману.

Субстанция при таком окрашивании количественно не уменьшается и становится рельефнее.

Источник: https://veterinarua.ru/...zhivotnykh-vasilev-a-v-1956/1894-okraska-mazkov.html

Окраска по методу романовского-гимза

Окраска по Романовскому — Гимзе

Моментокрашивания:

Готовыйкраситель жидкого вида перед началомокрашивания мазков разводят вдистиллированной воде в соотношении1-2 капель красителя на 1 мг воды. Мазкиокрашиваются во влажной камере притемпературе  37 °C в течение 20-25 минут.После завершения окраски мазки промываютсяв проточной воде, сушатся на воздухе иисследуются с помощью масляных импрессий.

Красящуюсмесь Романовского-Гимзы, в основекоторой имеется краска РомановскогоРайта, растворяют в виде порошка в смесиравноправных объемах глицерина иметилового спирта в соотношении 800 мгкрасителя к 100 мл растворителя.

Красительобладает плохой растворимостью,вследствие чего его следует перетереть с растворителем  в количественномсоотношении 300мг к 100 мг, затем, добавлятькраситель при этом постоянно помешиватьмассу до получения требуемой концентрации.На приготовление красителя требуетсянесколько дней.

Следует акцентироватьвнимание на том, что в качестверастворителей нужно применять химическичистый метиловый спирт и глицерин, таккак именно примеси являются причинойухудшения свойств красителя. 100 % этиловыйспирт может стать идеальной заменойметиловому спирту.

Готовую красящуюсмесь следует хранить в плотно закрытом сосуде в прохладном сухом месте.

Специальныйраствор Гимза.

Составляющиекрасителя:

  • Азур 1 — 3,772 г
  • Эозин — 2,165 г
  • Метиленовая синька (медиц.) — 1,563 г
  • Метанол (ЧДА) — 750,0 мл
  • Глицерин (ЧДА) — 256,0 мл

Методокрашивания

Мазки,акцентированные в метиловом спирте,окрашивают на протяжении 40-120 минутраствором, в состав которого входят 1мл приготовленной краски жидкой формы,2 мл главного буферного раствора и 47 млдистиллированной воды. Используютфосфатный буфер, на рН которого оказываетвлияние вид мазка:

  • мазок костного мозга — 5,8 — 6,0;
  • мазок крови — 6,4 — 6,5;
  • выявление простейших — 6,8;
  • малярийные плазмодия — 7,0 — 7,2.

Ополаскиваниепроводят в дистиллированной воде, затемвысушивают и изучают при иммерсии.

Результатыокрашивания:

АмастиготыLeishmania tropica, находящиеся – в макрофагах.Увеличение 10×100, окрашивание по Гимзе.

Бактериивследствие окрашивания приобретаютфиолетово-красный оттенок, цитоплазмаклеток —  голубой цвет, ядра — красный. Вследствие окраски простейшихих цитоплазма становится голубогоцвета, а ядра — красно-фиолетового

http://journal.microbe.ru/files/pdf/2010_103_48.pdf

Материалыи методы В исследованиях использоваливакцинный штамм Y. pestis EV линии НИИЭГ,полученный из ФГУ «48 ЦНИИ МинобороныРФ». Микробную куль- туру, выращеннуюна плотной питательной среде на основегидролизата рыбной муки с добавлениемген- цианвиолета, суспендировали в 0,9 %растворе хло- рида натрия. Оптическуюплотность (ОП) суспензии доводили до1,0 усл. ед.

при длине волны 540 нм. Дляизмерения ОП применяли фотоэлектроколориметрКФК-2 и кюветы длиной оптического пути5 мм. Пробы венозной крови людей получалииз ФГЛУ «Кировская областная станцияпереливания крови», пробы крови отживотных – из питомника ФГУ «48 ЦНИИМинобороны РФ», ФГУП учхоз Вятской ГСХА«Чистые пруды», ФГУ «Кировская областнаястанция по борьбе с болезнями животных».

В каче- стве антикоагулянтов при взятиикрови применяли 3,8 % раствор лимонно-кислогонатрия (1:10) или ге- парин (3 ЕД на 1 мл). Вдень взятия крови эритроци- ты триждыотмывали десятикратным объемом 0,9 %раствора хлорида натрия путемцентрифугирования при 1000 об/мин в течение5 мин и ресуспендирова- ли в этом жерастворе. Конечную концентрацию эри-троцитов доводили до 1,0·1012/л.

В пробиркахсмешивали по 1,0 мл суспензии эри- троцитови по 2,5 мл суспензии бактерий. В качествеконтроля использовали пробы, содержащие:2,5 мл суспензии микробных клеток и 1,0 мл0,9 % раство- ра хлорида натрия; 1,0 млсуспензии эритроцитов и 2,5 мл 0,9 % растворахлорида натрия.

Пробы вы- держивали встатических и динамических условиях(вращающаяся платформа) при (20±1) °С и(37±1) °С в течение 5, 10, 20, 30, 40 и 50 мин, послецентри- фугировали при 1000 об/мин в течение3,0 мин для осаждения эритроцитов. Затемиз проб отбирали на- досадочную жидкостьв объеме 2,0 мл и на КФК-2 определялизначение ее ОП.

Адгезивную способностьбактерий оценивали по введенному намипоказателю адгезии (ПА), кото- рыйрассчитывали по формуле: где ПА –показатель адгезии, Дк1 – ОП надоса-дочной жидкости в контрольной пробе 1,Дк2 – ОП Микробиология, иммунодиагностика,иммунопрофилактика УДК 616.981.452:59В.А.Оборин, Е.В.Пименов, А.Г.

Ивонин Изучениеадгезии бактерий вакцинного штаммаYersinia pestis EV НИИЭГ к эритроцитам животныхфотоколориметрическим методом ГОУ ВПО«Вятский государственный университет»,Киров С помощью фотоколориметрическогометода изучены адгезивные свойстваклеток вакцинного штамма Y. pestis EV НИИЭГв отношении эритроцитов лабораторных,домашних и сельскохозяйственныхживотных.

Установлено, что уровеньадгезии бактерии зависит как от видовойпринадлежности эритроцитов, так и отусловий инкубации микробных иэукариотических клеток. Полученныеданные позволяют предположить, чтовзаимодействие эри- троцитов с Y. pestisимеет определенное значение в развитииинфекционного процесса, обусловленноговозбуди- телем чумы.

Ключевые слова:адгезия, бактерии, вакцинный штамм Y.pestis EV НИИЭГ, эритроциты. МИКРОБИОЛОГИЯ,ИММУНОДИАГНОСТИКА, ИММУНОПРОФИЛАКТИКА49 надосадочной жидкости в контрольнойпробе 2, Доп – ОП надосадочной жидкостив опытной пробе.

В каждой серии опытоввыполняли по три не- зависимых определения;статистическую обработку полученныхданных проводили с помощью компью-терной программы для обработки медицинскойин- формации «Biostat 4.03». Результаты иобсуждение Известно, что при изученииадгезивных свойств бактерий важнымявляется определение оптимальныхусловий их взаимодействия с клетками-мишенями[2, 3, 5].

Поэтому на первом этапе исследованийизучено влияние продолжительностиинкубации проб на уро- вень адгезииклеток Y. pestis EV НИИЭГ к эритроци- тамразличных видов животных. Для этогоэритро- циты морской свинки, белой мыши,барана, лошади и свиньи инкубировалина вращающейся платформе при температуре(37±1) °С в течение различного вре- мени,после чего определяли значения ПА (рис.1).

Как видно из рис. 1, степень адгезиибактерий зависела как от видовойпринадлежности эритро- цитов, так и отпродолжительности совместной ин- кубациимикробных клеток с эритроцитами. В про-веденном эксперименте высокие значенияПА отме- чались в отношении эритроцитовдомашней свиньи, белой мыши, морскойсвинки.

В меньшей степени адгезиябактерий проявлялась к эритроцитамбара- на, и незначительно – к эритроцитамлошади. ПА Y. pestis EV НИИЭГ к эритроцитамсвиньи дости- гал максимального значенияуже после 5 мин инку- бации. Увеличениепродолжительности инкубации микроорганизмовс эритроцитами других животных до 30 минприводило к существенному повышениюуровня адгезии.

При дальнейшем увеличениисрока инкубации роста ПА не регистрировали.Поэтому в последующих исследованияхучет результатов адге- зии предложилипроводить после 30-минутной инку- бациипроб. Далее изучили влияние условийсовместной ин- кубации бактерий сэритроцитами на ПА (рис. 2). При этом пробывыдерживали в статических и ди- намическихусловиях при различных температурныхрежимах.

Адгезия клеток Y. pestis EV НИИЭГ кэритроци- там домашней свиньи не зависелаот температуры и условий инкубации. Вто же время, прикрепление бактерий кэритроцитам других видов животных(морской свинки, белой мыши, барана илошади) наиболее интенсивно происходилопри (37±1) °С на вращающейся платформе.

Следовательно, данные условия инкубацииявляются наиболее подходящи- ми дляоценки адгезии клеток Y. pestis EV НИИЭГ кэритроцитам животных. Выбрав оптимальныережимы инкубации (вы- держивание пробв динамических условиях при (37±1) °С втечение 30 мин), определили значения ПАв отношении эритроцитов, более широкойвидо- вой принадлежности. Результатыэтих исследований приведены в таблице.

Анализируя данные таблицы, эритроцитыраз- личной видовой принадлежностиможно разделить на 3 группы в зависимостиот степени адгезии к ним клеток Y. pestisEV НИИЭГ. К первой группе относят- сяэритроциты белых крыс, домашних свиней,белых мышей, морских свинок, а такжелюдей, для которых ПА составляет свыше60 %.

Вторая группа эритро- цитов (золотистыехомячки, собаки, козы, овцы и ко- ровы)имеет ПА в пределах 40–60 %, третья (лошади,кошки) – ниже 30 %. При сопоставлениирезультатов определения ПА Y. pestis EV НИИЭГк эритроцитам людей и различных видовживотных, с данными ли- тературы по ихвосприимчивости и чувствительности кинфицированию Y.

pestis выявляется следующаязакономерность: чем выше ПА, темвосприимчивее и чувствительнее кзаражению возбудителем чумы являетсявид. Так, у людей и животных, обладающихвысокой восприимчивостью и чувствительностьюк инфицированию Y. pestis, ПА превышает 60%, а жи- вотные с высокой восприимчивостью,но низкой и средней чувствительностьюПА находится на уровне 40–60 %.

В то жевремя, у животных, имеющих ПА ниже 30 %отмечается низкая восприимчивость иличувствительность к инфицированиювозбудителем чумы. Исключение составляютсобаки, которые за- Рис. 1. Динамикаизменения ПА Y. pestis EV НИИЭГ к эритроцитамживотных при различной продолжительностиинкубации проб Рис. 2. Динамика измененияПА Y.

pestis EV НИИЭГ к эритроцитам животныхпри различных условиях инкубации пробПроблемы особо опасных инфекций, вып.103, 2010 50 нимают промежуточное положениемежду первой и второй группой, так каку них ПА ниже 60 %, но они, являясьвосприимчивыми к заражению, обладаютнизкой чувствительностью. Таким образом,проведенные исследования по- казали,что клетки Y.

pestis EV НИИЭГ обладаютспособностью прикрепляться к эритроцитамлюдей и животных. При этом установлено,что уровень ад- гезии бактерий зависитот видовой принадлежно- сти эритроцитови от условий их взаимодействия. Выявлено,что эритроциты ряда животных прояв-ляют свою способность фиксироватьбактерии в определенных условиях, чтоможет быть обусловле- но как морфологическими,так и функциональными различиямирецепторного аппарата эритроцитов раз-личных видов млекопитающих. Экспериментальнымпутем выбраны оптимальные условия,позволяющие выявлять потенциальнуюспособность эритроцитов фиксироватьна своей поверхности бактерии иссле-дуемого штамма. Сравнение полученныхрезультатов с данными литературы повосприимчивости и чувствительности кзаражению возбудителем чумы человекаи разных видов животных позволяетсделать предположение о том, чтоэритроциты играют определенную роль ввосприимчивости к инфицированию Y.pestis и реа- лизации инфекционного процессапри чуме.

Источник: https://studfile.net/preview/5623449/

ПОИСК

Окраска по Романовскому — Гимзе

    Краситель Романовского—Гимзы [c.343]

    Краситель Романовского— Гимзы состоит из метиленового синего, эозина и азура, благодаря чему он окрашивает в разные цвета элементы микроорганизма и форменные элементы крови.

Перед обработкой препарата краситель разводят водой (pH 7,0 — 7,2) в 10 — 20 раз. Степень разведения меняется в зависимости от серии красителя и pH воды. Поэтому рекомендуют каждую новую серию красителя и воду проверять на контрольных мазках крови. [c.

20]

    Краситель Романовского — Гимзы, имеющий в растворе сине-фиолетовый цвет, окрашивает цитоплазму форменных элементов ткани в голубовато-синий цвет, а ядра клеток, так же как и микробные тела, в фиолетово-красный (см. рис. 30). [c.32]

    Толстую каплю независимо от способа приготовления высушивают постепенно (не на солнце и без подогрева) и не фиксируют. Окрашивают спустя несколько часов после взятия крови 4 — 5%-м водным раствором красителя Романовского — Гимзы в течение 20—25 мин. [c.342]

    Окраска по Романовскому — Гимзе. Краситель Романовского—Гимзы состоит из смеси азура, эозина и метиленового синего.

Непосредственно перед употреблением к 10 мл дистиллированной воды (pH 7,0—7,2) прибавляют 10 капель имеющегося в продаже красителя Романовского — Гимзы. Приготовленный раствор красителя тотчас наливают на фиксированный мазок или предметное стекло с окрашиваемым.

препаратом погружают в стаканчик с красителем. Через час краситель сливают, препарат промывают водой и высушивают па воздухе. [c.32]

    Метод Романовского-Гимза. Этим методом в клетках микроорганизмов одновременно выявляют ядерные вещества и волю-тин. Препарат фиксируют 5 мин метиловым спиртом или фиксатором Карнуа.

В последнем случае для удаления следов уксусной кислоты препарат промывают спиртом и тщательно высушивают на воздухе. Окрашивают, препарат красителем Романовского-Гимза в течение суток, затем ополаскивают слабощелочной (pH 7,2) водой, высушивают и микроскопируют.

Ядерные вещества окрашиваются в красно-фиолетовый цвет, цитоплазма – в слабо-розовый. [c.35]

    Микроскопия. У больного во время приступа или перед повторным приступом берут кровь из пальца и готовят препарат толстой капли и мазок. Вначале окрашивают препарат толстой капли, так как при его исследовании больше вероятности получить положительный результат.

На высушенный нефиксированный препарат капли крови наливают на 35 — 45 мин краситель Романовского—Гимзы, затем препарат осторожно промывают водой и высушивают. Под микроскопом боррелии имеют вид тонких нитей сине-фиолетового цвета с несколькими большими неравномерными завитками (см. цв. вклейку, рис.

24). [c.233]

    Широко применяется окраска по Романовскому—Гимзе. Фиксированные мазки заливают свежим красителем Романовского — Гимзы на 25 — 45 мин (в зависимости от температуры воздуха в помещении). Для ускорения окраски можно подогревать краситель до 60 —70°С, не допуская закипания( ). Мазки промывают струей воды и сушат в вертикальном положении. [c.341]

    Приготовление микропрепаратов. На чистом обезжиренном стекле готовят мазок и подсушивают на воздухе. Полученный препарат фиксируют метиловым, абсолютным этиловым спиртом или смесью Никифорова в течение 5 мин либо охлажденным безводным ацетоном в течение 3 — 5 мин. После фиксации высушенные мазки окрашивают свежеприготовленным красителем Романовского — Гимзы в течение 1 ч, затем мазок быстро промывают 96%-м этиловым спиртом для удаления избытка красителя, высушивают и микроскопируют с использованием иммерсионной системы при увеличении 900—1500х. [c.244]

    Окраска по Романовскому— Гимзе в модификации Филипсона. Смешивают ] часть красителя Романовского —Гимзы и 3 части 95%-го этилового спирта.

Нефиксированные мазки заливают этой смесью на 1,0 — 1,5 мин, затем, не сливая краски, осторожно по каплям добавляют такое же количество дистиллированной воды, не допуская, чтобы жидкость сливалась со стекла.

Через 20 — 30 мин мазки промывают водой и высушивают. [c.341]

    Краситель Романовского-Гимза. Промышленность выпускает препарат из смеси азура (органический краситель, полученный из метиленового синего), эозина и метиленового синего. Непосредственно перед употреблением к 10 мл дистиллированной воды, имеюш,ей нейтральную или слабош,елочную реакцию (pH 7,2), прибавляют десять капель красителя. [c.35]

    Окраска по Романовскому — Гимзе в модификации Филипсона. Смешивают 1 часть красителя Романовского — Гимзы и 3 части 95%-го этилового спирта. Нефиксированные мазки заливают этой смесью на 1,0 — [c.341]

Смотреть страницы где упоминается термин Краситель Романовского — Гимзы: [c.105]    [c.50]    Смотреть главы в:

Микробиология с техникой микробиологических исследований изд.4 -> Краситель Романовского — Гимзы

Романовского

© 2019 chem21.info Реклама на сайте

Источник: https://www.chem21.info/info/1894325/

Консультация доктора
Добавить комментарий